Sujet de stages/Oligodendrocyte VDRKO
Intitulé et adresse du laboratoire d’accueil où aura lieu le stage
Laboratoire ICube (Equipe IMIS Neurocrypto)
ICube-IPB
4, rue Kirschleger
67000 Strasbourg
Nom, prénom et adresse email de l’encadrant
Encadrant : ANTAL Cristina (mc.antal@unistra.fr) tel : 03 68 85 32 29
Période
Entre Septembre 2017 et Juin 2018
Titre du stage
Rôle du cil primaire dans la prolifération et la myélinisation par les oligodendrocytes
Résumé du projet
La myéline est un composant essentiel du système nerveux central et périphérique. Au cours des stades précoces de différenciation, les cellules myélinisantes présentent un cil primaire. Le cil primaire est une plaque tournante pour les voies de signalisation impliquées dans la prolifération et la différenciation cellulaires. Le seul intermédiaire bien caractérisé entre les récepteurs membranaires ciliaires et la machinerie intra-cellulaire est l’adénylate cyclase. L’adénylate cyclase est le médiateur de l’effet des sels de lithium (substances utilisées pour le traitement des troubles bipolaires) sur la longueur du cl primaire (Ou et al., 2009). Récemment, il a été montré que le traitement par des sels de lithium augmente la myélinisation axonale dans le système nerveux périphérique (Makoukji et al., 2009; Fang et al., 2016). Le projet proposé a pour objectif d’étudier in vitro l’action des sels de lithium sur le cil primaire et sur les propriétés des oligodendrocytes, les cellules myélinisantes du système nerveux central par comparaison aux cellules de Schwann, les cellules myélinisantes du système nerveux périphérique. Dans ce but, le candidat utilisera des cellules issues de souris trangéniques exprimant la GFP sous le contrôle d’un promoteur spécifique des cellules myélinisantes (souris plp-eGFP).
Technologies acquises à l’issue du stage de M2 :
Gestion de lignée de souris transgéniques, génotypage, dissection des structures du système nerveux central et périphérique, mise en culture primaire de différents types de cellules myélinisantes, techniques de co-culture, techniques d’immunofluorescence et immunocytochimie, observation au microscope à fond clair et à épifluorescence, microscopie confocale, analyse qualitative et quantitative d’images